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维生素E琥珀酸酯下调mdr1/Pgp表达逆转K562/ADM耐药细胞的凋亡抑制(1)

            作者:郭璐,魏虎来, 张亚莉, 刘建民

【摘要】    目的 研究维生素E琥珀酸酯(Vitamin E succinate, VES)诱导多药耐药K562/ADM细胞凋亡的分子机制。方法 采用四氮唑蓝比色法(MTT)检测K562/ADM增殖活性;细胞形态学和Annexin V/PI双标记法检测细胞凋亡;RTPCR检测mdr1基因和Caspase3基因mRNA的表达;流式细胞法(FCM)测定Pgp蛋白表达水平和Caspase3活性。结果 VES显著抑制K562/ADM细胞的增殖;经VES处理后细胞形态上出现典型的凋亡改变;Annexin Ⅴ/PI双染检测凋亡细胞明显增加;mdr1 mRNA表达和P糖蛋白(Pglycoprotein,Pgp)合成明显降低,Caspase3 mRNA表达和Caspase3活性显著增强;VES增加K562/ADM细胞对ADM的敏感性。结论 VES诱导mdr1/Pgp高表达的K562/ADM耐药细胞凋亡,其主要机制为下调mdr1/Pgp表达而逆转Pgp介导的细胞凋亡抑制和耐药性。

【关键词】  维生素E琥珀酸酯 多药耐药 凋亡抑制 P糖蛋白;Caspase3;白血病

    Key words:Vitamin E succinate;  Multidrug resistance; Apoptosis resistance; Pglycoprotein; Caspase3; Leukemia

  维生素E琥珀酸酯(Vitamin E succinate, VES)是α生育酚的6位羟基与琥珀酸酯化而形成的衍生物。研究证实,VES可选择性地杀伤人白血病、乳腺癌、前列腺癌等多种肿瘤细胞,而对正常细胞无抑制效应[13]。有关VES对耐药白血病(肿瘤)细胞作用的研究少见,我们曾研究证实VES可抑制白血病K562/ADM耐药细胞增殖并诱导其凋亡[4]。本文以白血病多药耐药K562/ADM细胞为模型,观察VES诱导其凋亡过程中耐药基因mdr1及其编码产物P糖蛋白(Pglycoprotein,Pgp)表达的变化,探讨VES诱导耐药细胞凋亡的分子机制。

    1  材料和方法

    1.1  试剂

    维生素E琥珀酸酯(Vitamin E succinate, VES)为美国Sigma公司产品,用无水乙醇配制成50 mmol/L的储存液。RPMI1640为美国Gibco BRL公司产品;新生牛血清购自杭州四季清生物工程材料研究所。阿霉素(ADM)为日本明治制药公司产品。MTT、SDS、琼脂糖、RNase、溴化丙锭(EB)、碘化丙啶(PI)和二乙基焦碳酸(DEPC)均由美国Sigma公司出品。100bp DNA Ladder Marker由美国Promega公司出品。抗Pgp单抗(MRK16)为Kamiya Biomedical公司产品,PE标记的羊抗鼠IgG2a为Caltag公司产品。TRIZOL试剂由美国Invitrogen公司生产。AMV一步法RTPCR试剂盒购自上海生物工程有限公司。mdrl、Caspase3和βactin基因引物由上海生物工程有限公司合成。FITC标记的DEVDFMK和Annexin V试剂盒为Biovision公司产品。

    1.2  细胞培养

    K562/ADM多药耐药白血病细胞由兰州大学医学实验中心保存,细胞在含有15%小牛血清、100u/ml青霉素、100μg/ml链霉素和2mmol/L L谷氨酰胺的RPMI1640完全培养基中,置37℃、5%CO2孵箱中培养,定期添加ADM(~5.0mg/L)以刺激mdr1/Pgp高表达。细胞在无ADM的条件下培养1周后用于实验。

    1.3  细胞增殖活性

    K562/ADM细胞以2×108/L接种于96孔培养板(Costar)中,分别加入10~60μmol/L VES,对照组加入终浓度<0.2%(V/V)的无水乙醇。培养24~96h后MTT比色法[5]检测,并计算细胞增殖抑制率和半数抑制浓度(IC50)。

    1.4  细胞形态学观察

    VES处理后的K562/ADM细胞,细胞离心涂片机(StatSpin Cytofuge 2型)离心涂片,WrighGiemsa染色,光镜观察。同时收集细胞,3%戊二醛固定,经脱水,环氧树脂包埋,超薄切片,铀铅双重染色,透射电镜(JEM1230)观察细胞超微结构。

    1.5  Annexin Ⅴ/PI双标记检测凋亡细胞

    按试剂盒说明操作。收集K562/ADM细胞,PBS洗涤,重悬于Binding Buffer中,加入PI和FITC 标记的Annexin Ⅴ, 室温避光染色5min,流式细胞仪(BeckmanCoulter Epics XL)检测[6]。

    1.6  RTPCR检测mdr1和Caspase3基因mRNA表达

    TRIZOL法提取细胞总RNA,以βactin为内参照,AMV一步法RTPCR检测 mdr1和Caspase3 基因mRNA表达情况。引物分别为:mdr1:上游5’CCCATCATTGCAATAGCAGG3’,下游5’GTTCAAACTTCTGCTCCTGA3’,扩增产物167bp;Caspase3:上游5’CAAACTTTTTCAGAGGGGATCG3’,下游5’GCATACTGTTTCAGCATGGCAC3’,扩增产物272 bp;βactin:上游5’GTGGGGCGCCCCAGGCACCA3’,下游5’CTCCTTAATGTCACGCACGATTTC3’,扩增产物548bp。PCR扩增产物凝胶电泳,凝胶图像分析系统(Syngene ChemiGenius 2)分析。

    1.7  Pgp表达测定

    收集K562/ADM细胞,PBS洗涤,分别加入鼠抗人Pgp单抗MRK16(一抗)和PE标记的羊抗鼠IgG2a(二抗),FCM检测Pgp的表达阳性率和平均荧光强度(MFI)[7]。

    1.8  Caspase3活性测定

    根据试剂盒说明操作。收集细胞,PBS洗涤,加入FITCDEVDFMK,37℃孵育1h,洗涤,FCM检测活化Caspase3活性[8]。

    1.9  药物敏感性

    K562/ADM细胞经20μmol/L和40μmol/L VES与不同浓度的ADM联合处理48h,细胞终止培养后MTT比色法[5]检测并计算细胞增殖抑制率。

    1.10  统计学分析

    采用SPSS10.0统计软件进行相关性分析和直线回归。

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